БИБЛИОТЕКА НОРМАТИВНЫХ ДОКУМЕНТОВ

ГОСТ 34104-2017. Межгосударственный стандарт. Корма и кормовые добавки. Метод идентификации генетически модифицированных линий сои, кукурузы и рапса с использованием ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени

9 Постановка ПЦР и проведение амплификации с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени (Real Time PCR)

 

9.1 Приготовление реакционной ПЦР-смеси

Для приготовления реакционной ПЦР-смеси для определения генетически модифицированной линии сои, кукурузы или рапса берут 1 мм3 деионизированной воды, по 1 мм3 каждого соответствующего праймера с маркировкой "F" по 5.3.2 концентрацией 5·10-6 моль/дм3, по 1 мм3 каждого праймера с маркировкой "R" по 5.3.2 концентрацией 5·10-6 моль/дм3, по 1 мм3 каждого зонда с маркировкой "P" по 5.3.2 концентрацией 3·10-6 моль/дм3, 3 мм3 раствора дНТФ и смешивают в пробирке вместимостью 1,5 см3. Срок хранения готовой ПЦР-смеси при температуре не выше минус 18 °C - не более 12 мес.

9.2 Постановка ПЦР

9.2.1 ДНК, экстрагированную из анализируемой пробы (включая стандартные образцы), испытывают не менее чем в двух повторностях.

9.2.2 Для проведения ПЦР в одной пробирке смешивают 10 мм3 ПЦР-смеси по 9.1, к которой добавляют 5 мм3 ПЦР-буфера и 0,5 мм3 термостабильной Taq полимеразы. Смесь перемешивают на встряхивателе, осаждая кратковременным центрифугированием.

9.2.3 Вносят по 15 мм3 смеси, полученной по 9.2.2, в микропробирку вместимостью 0,2 см3, затем, используя наконечник с аэрозольным барьером, добавляют в нее 10 мм3 ДНК, полученной из анализируемой пробы (ДНК-проба) в соответствии с разделом 8. Общий объем реакционной смеси - 25 мм3.

Примечание - Необходимо избегать попадания сорбента в реакционную смесь.

 

9.3 Контрольные реакции амплификации:

- отрицательный контроль ПЦР (К-) - вместо ДНК-пробы в микропробирку с 15 мм3 смеси по 9.2.2 вносят 10 мм3 TE-буфера;

- положительный контроль ПЦР (К+) - вместо ДНК-пробы в микропробирку с 15 мм3 смеси по 9.2.2 вносят 10 мм3 1%-ного стандартного образца состава ГМ сои, ГМ кукурузы или ГМ рапса.

9.4 Проведение амплификации и детекции флуоресцентного сигнала

Программируют прибор для проведения полимеразной цепной реакции в режиме реального времени в соответствии с инструкцией по эксплуатации.

Программы амплификации для идентификации линий ГМ сои, кукурузы и рапса различаются для разных ГМ линий и приведены в таблицах 4 - 11.

Программа амплификации для идентификации ГМ сои линий 40-3-2, A5547-127, A2704-12 приведена в таблице 4.

 

Таблица 4

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

сои линий 40-3-2, A5547-127, A2704-12

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Удерживание

95 °C

15 мин

1

-

Циклирование

95 °C

15 с

45

-

60 °C

30 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

72 °C

30 с

-

-

 

Программа амплификации для идентификации ГМ сои линий MON87701, BPS-CV127-9, FG72 приведена в таблице 5.

 

Таблица 5

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

линий сои MON87701, BPS-CV127-9, FG72

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

15 мин

1

-

Cycling 1/Циклирование 1

95 °C

10 с

10

-

60 °C

20 с

-

72 °C

10 с

-

Cycling 2/Циклирование 2

95 °C

10 с

35

-

55 °C

20 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

72 °C

10 с

-

 

Программа амплификации для идентификации ГМ сои линий MON89788, SYHTOH2, DP-305423, DP-356043, MON87705, MON87708, MON87769 приведена в таблице 6.

 

Таблица 6

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

линий сои MON89788, SYHTOH2, DP-305423,

DP-356043, MON87705, MON87708, MON87769

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

15 мин

1

-

Cycling/Циклирование

95 °C

15 с

45

-

60 °C

60 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

 

Программа амплификации для идентификации ГМ сои линии DAS-44406, DAS-81419 приведена в таблице 7.

 

Таблица 7

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

линий сои DAS-44406, DAS-81419

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

10 мин

1

-

Cycling/Циклирование

95 °C

15 с

40

-

60 °C

60 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

 

Программа амплификации для идентификации ГМ сои линии DAS-68416 приведена в таблице 8.

 

Таблица 8

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

линий сои DAS-68416

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

10 мин

1

-

Cycling/Циклирование

95 °C

15 с

45

-

60 °C

60 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

 

Программа амплификации для идентификации ГМ кукурузы линий MON98140, MIR162, 5307, Bt176, MIR604, 3272 приведена в таблице 9.

 

Таблица 9

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

линий кукурузы MON98140, MIR162, 5307, Bt176, MIR604, 3272

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

10 мин

1

-

Cycling/Циклирование

95 °C

15 с

40

-

60 °C

60 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

 

Программа амплификации для идентификации ГМ кукурузы линий TC1507, MON87460, LY038, DAS40278-9, MON89034, MON810, NK603, T25, GA21, MON863, MON88017 приведена в таблице 10.

 

Таблица 10

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

линий кукурузы TC1507, MON87460, LY038, DAS40278-9,

MON89034, MON810, NK603, T25, GA21, MON863, MON88017

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

10 мин

1

-

Cycling/Циклирование

95 °C

15 с

45

-

60 °C

60 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

 

Программа амплификации для идентификации ГМ кукурузы линий 59122, Bt11. приведена в таблице 11.

 

Таблица 11

 

Программа амплификации для идентификации ГМ

линий кукурузы 59122, Bt11

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

10 мин

1

-

Cycling/Циклирование

95 °C

15 с

50

-

60 °C

60 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

 

Программа амплификации для идентификации ГМ рапса линий GT73, MON88302, RF2, MS1, MS8, T45, RF1, RF3, Topas19/2 приведена в таблице 12.

 

Таблица 12

 

Программа амплификации для идентификации ГМ линий

рапса линий GT73, MON88302, RF2, MS1, MS8, T45,

RF1, RF3, Topas19/2

 

Стадия

Температура

Время

Количество циклов

Детекция

Hold/Удержание температуры

95 °C

15 мин

1

-

Cycling/Циклирование

95 °C

15 с

40

-

60 °C

60 с

По каналам FAM/Green, JOE/Yellow

 

Детекцию флуоресцентного сигнала проводят на каналах FAM и JOE. По каналу FAM регистрируют уровень флуоресценции участка части генно-инженерной конструкции, специфичной для генома тестируемой генетически модифицированной линии, по каналу JOE - для эндогенной ДНК ГМ сои, ГМ кукурузы, ГМ рапса. Кривые накопления флуоресцентного сигнала анализируют с использованием программного обеспечения используемого прибора для проведения ПЦР в режиме реального времени (Real Time PCR).

9.5 Учет и интерпретация результатов

9.5.1 Полученные в ходе испытания данные (кривые накопления флуоресцентного сигнала) анализируют по нескольким каналам детекции с использованием программного обеспечения прибора.

9.5.2 Результаты интерпретируют на основании наличия (или отсутствия) пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией на графике зависимости интенсивности флуоресценции от количества циклов, что соответствует значению порогового цикла Ct.

9.5.3 Учет результатов испытания следует начинать с результатов амплификации ДНК контрольных образцов в соответствии с таблицами оценки результатов контрольных реакций (таблицы 8 - 11). Для положительного контроля ПЦР в таблицах результатов по каналам FAM/Green и JOE/Yellow должны присутствовать значения порогового цикла Ct соответствующих значений в зависимости от программы амплификации. Для отрицательного контроля экстракции и отрицательного контроля ПЦР значения порогового цикла Ct по всем каналам должны отсутствовать. Отсутствие положительного сигнала в пробе с положительным контролем ПЦР (К+) или превышение граничного значения Ct, указанного в таблице, может свидетельствовать об ошибках, допущенных на этапе постановки ПЦР. В таком случае необходимо провести этап ПЦР повторно.

 

Таблица 13

 

Оценка результатов контролей для таблиц 4, 6, 8, 10

 

Контроли

Контролируемый этап испытаний

Значение Ct по каналу

FAM/Green

JOE/Yellow

В-

Экстракция ДНК

Нет значений

Нет значений

К-

ПЦР

Нет значений

Нет значений

К+

ПЦР

<= 31

<= 31

Проба

<= 37

<= 35

 

В образце обнаружена ДНК сои/кукурузы, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 35 (таблица 13). При получении значения Ct > 35 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим испытанию из-за низкого содержания в нем ДНК кукурузы/сои.

ДНК ГМ линии считают обнаруженной, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 37.

 

Таблица 14

 

Оценка результатов контролей для таблиц 5, 7, 9

 

Контроли

Контролируемый этап испытаний

Значение Ct по каналу

FAM/Green

JOE/Yellow

В-

Экстракция ДНК

Нет значений

Нет значений

К-

ПЦР

Нет значений

Нет значений

К+

ПЦР

<= 21

<= 21

Проба

<= 27

<= 25

 

В образце обнаружена ДНК сои/кукурузы, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 25 (таблица 14). При получении значения Ct > 25 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем ДНК кукурузы/сои.

ДНК ГМ линии обнаружена, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 27.

 

Таблица 15

 

Оценка результатов контролей для таблицы 11

 

Контроли

Контролируемый этап испытаний

Значение Ct по каналу

FAM/Green

JOE/Yellow

В-

Экстракция ДНК

Нет значений

Нет значений

К-

ПЦР

Нет значений

Нет значений

К+

ПЦР

<= 35

<= 35

Проба

<= 40

<= 37

 

В образце обнаружена ДНК кукурузы, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 37 (таблица 15). При получении значения Ct > 37 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем ДНК кукурузы.

ДНК ГМ линии обнаружена, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 40.

 

Таблица 16

 

Оценка результатов контролей для таблицы 12

 

Контроли

Контролируемый этап испытаний

Значение Ct по каналу

FAM/Green

JOE/Yellow

B-

Экстракция ДНК

Нет значений

Нет значений

K-

ПЦР

Нет значений

Нет значений

K+

ПЦР

<= 31

<= 31

Проба

<= 37

<= 37

 

В образце обнаружена ДНК рапса, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 37 (таблица 16). При получении значения Ct > 37 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем ДНК рапса.

ДНК ГМ линии обнаружена, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 37.

9.5.4 Проверка условий достоверности испытаний

9.5.4.1 Отсутствие положительного сигнала в пробе с положительным контролем ПЦР (К+) или превышение граничных значений Ct, указанных в таблицах 13 - 16, может свидетельствовать о неправильно выбранной программе амплификации и о других ошибках, допущенных на этапе постановки ПЦР. В таком случае необходимо провести этап ПЦР повторно.

9.5.4.2 Появление любого значения Ct в таблице результатов для отрицательного контроля экстракции (на любом из каналов) и для отрицательного контроля ПЦР (на любом из каналов) свидетельствует о наличии контаминации реактивов или образцов. В этом случае результаты анализа по всем пробам считаются недействительными. Требуется повторить ПЦР-исследование всех проб, начиная с этапа экстракции ДНК, а также предпринять меры по выявлению и ликвидации источника контаминации.

9.5.4.3 При получении значения Ct в таблице результатов по каналам Yellow и/или Green для анализируемой пробы более указанных пороговых значений Ct требуется повторно провести ПЦР-исследование соответствующего образца, начиная с этапа экстракции ДНК. При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем растительной ДНК и/или ДНК ГМ линии.

 

 

 

 

TOC