ГОСТ 34104-2017. Межгосударственный стандарт. Корма и кормовые добавки. Метод идентификации генетически модифицированных линий сои, кукурузы и рапса с использованием ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени
9 Постановка ПЦР и проведение амплификации с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени (Real Time PCR)
9.1 Приготовление реакционной ПЦР-смеси
Для приготовления реакционной ПЦР-смеси для определения генетически модифицированной линии сои, кукурузы или рапса берут 1 мм3 деионизированной воды, по 1 мм3 каждого соответствующего праймера с маркировкой "F" по 5.3.2 концентрацией 5·10-6 моль/дм3, по 1 мм3 каждого праймера с маркировкой "R" по 5.3.2 концентрацией 5·10-6 моль/дм3, по 1 мм3 каждого зонда с маркировкой "P" по 5.3.2 концентрацией 3·10-6 моль/дм3, 3 мм3 раствора дНТФ и смешивают в пробирке вместимостью 1,5 см3. Срок хранения готовой ПЦР-смеси при температуре не выше минус 18 °C - не более 12 мес.
9.2 Постановка ПЦР
9.2.1 ДНК, экстрагированную из анализируемой пробы (включая стандартные образцы), испытывают не менее чем в двух повторностях.
9.2.2 Для проведения ПЦР в одной пробирке смешивают 10 мм3 ПЦР-смеси по 9.1, к которой добавляют 5 мм3 ПЦР-буфера и 0,5 мм3 термостабильной Taq полимеразы. Смесь перемешивают на встряхивателе, осаждая кратковременным центрифугированием.
9.2.3 Вносят по 15 мм3 смеси, полученной по 9.2.2, в микропробирку вместимостью 0,2 см3, затем, используя наконечник с аэрозольным барьером, добавляют в нее 10 мм3 ДНК, полученной из анализируемой пробы (ДНК-проба) в соответствии с разделом 8. Общий объем реакционной смеси - 25 мм3.
Примечание - Необходимо избегать попадания сорбента в реакционную смесь.
9.3 Контрольные реакции амплификации:
- отрицательный контроль ПЦР (К-) - вместо ДНК-пробы в микропробирку с 15 мм3 смеси по 9.2.2 вносят 10 мм3 TE-буфера;
- положительный контроль ПЦР (К+) - вместо ДНК-пробы в микропробирку с 15 мм3 смеси по 9.2.2 вносят 10 мм3 1%-ного стандартного образца состава ГМ сои, ГМ кукурузы или ГМ рапса.
9.4 Проведение амплификации и детекции флуоресцентного сигнала
Программируют прибор для проведения полимеразной цепной реакции в режиме реального времени в соответствии с инструкцией по эксплуатации.
Программы амплификации для идентификации линий ГМ сои, кукурузы и рапса различаются для разных ГМ линий и приведены в таблицах 4 - 11.
Программа амплификации для идентификации ГМ сои линий 40-3-2, A5547-127, A2704-12 приведена в таблице 4.
Таблица 4
Программа амплификации для идентификации ГМ
сои линий 40-3-2, A5547-127, A2704-12
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Удерживание | 95 °C | 15 мин | 1 | - |
Циклирование | 95 °C | 15 с | 45 | - |
60 °C | 30 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow | ||
72 °C | 30 с | - | - |
Программа амплификации для идентификации ГМ сои линий MON87701, BPS-CV127-9, FG72 приведена в таблице 5.
Таблица 5
Программа амплификации для идентификации ГМ
линий сои MON87701, BPS-CV127-9, FG72
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 15 мин | 1 | - |
Cycling 1/Циклирование 1 | 95 °C | 10 с | 10 | - |
60 °C | 20 с | - | ||
72 °C | 10 с | - | ||
Cycling 2/Циклирование 2 | 95 °C | 10 с | 35 | - |
55 °C | 20 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow | ||
72 °C | 10 с | - |
Программа амплификации для идентификации ГМ сои линий MON89788, SYHTOH2, DP-305423, DP-356043, MON87705, MON87708, MON87769 приведена в таблице 6.
Таблица 6
Программа амплификации для идентификации ГМ
линий сои MON89788, SYHTOH2, DP-305423,
DP-356043, MON87705, MON87708, MON87769
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 15 мин | 1 | - |
Cycling/Циклирование | 95 °C | 15 с | 45 | - |
60 °C | 60 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow |
Программа амплификации для идентификации ГМ сои линии DAS-44406, DAS-81419 приведена в таблице 7.
Таблица 7
Программа амплификации для идентификации ГМ
линий сои DAS-44406, DAS-81419
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 10 мин | 1 | - |
Cycling/Циклирование | 95 °C | 15 с | 40 | - |
60 °C | 60 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow |
Программа амплификации для идентификации ГМ сои линии DAS-68416 приведена в таблице 8.
Таблица 8
Программа амплификации для идентификации ГМ
линий сои DAS-68416
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 10 мин | 1 | - |
Cycling/Циклирование | 95 °C | 15 с | 45 | - |
60 °C | 60 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow |
Программа амплификации для идентификации ГМ кукурузы линий MON98140, MIR162, 5307, Bt176, MIR604, 3272 приведена в таблице 9.
Таблица 9
Программа амплификации для идентификации ГМ
линий кукурузы MON98140, MIR162, 5307, Bt176, MIR604, 3272
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 10 мин | 1 | - |
Cycling/Циклирование | 95 °C | 15 с | 40 | - |
60 °C | 60 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow |
Программа амплификации для идентификации ГМ кукурузы линий TC1507, MON87460, LY038, DAS40278-9, MON89034, MON810, NK603, T25, GA21, MON863, MON88017 приведена в таблице 10.
Таблица 10
Программа амплификации для идентификации ГМ
линий кукурузы TC1507, MON87460, LY038, DAS40278-9,
MON89034, MON810, NK603, T25, GA21, MON863, MON88017
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 10 мин | 1 | - |
Cycling/Циклирование | 95 °C | 15 с | 45 | - |
60 °C | 60 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow |
Программа амплификации для идентификации ГМ кукурузы линий 59122, Bt11. приведена в таблице 11.
Таблица 11
Программа амплификации для идентификации ГМ
линий кукурузы 59122, Bt11
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 10 мин | 1 | - |
Cycling/Циклирование | 95 °C | 15 с | 50 | - |
60 °C | 60 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow |
Программа амплификации для идентификации ГМ рапса линий GT73, MON88302, RF2, MS1, MS8, T45, RF1, RF3, Topas19/2 приведена в таблице 12.
Таблица 12
Программа амплификации для идентификации ГМ линий
рапса линий GT73, MON88302, RF2, MS1, MS8, T45,
RF1, RF3, Topas19/2
Стадия | Температура | Время | Количество циклов | Детекция |
Hold/Удержание температуры | 95 °C | 15 мин | 1 | - |
Cycling/Циклирование | 95 °C | 15 с | 40 | - |
60 °C | 60 с | По каналам FAM/Green, JOE/Yellow |
Детекцию флуоресцентного сигнала проводят на каналах FAM и JOE. По каналу FAM регистрируют уровень флуоресценции участка части генно-инженерной конструкции, специфичной для генома тестируемой генетически модифицированной линии, по каналу JOE - для эндогенной ДНК ГМ сои, ГМ кукурузы, ГМ рапса. Кривые накопления флуоресцентного сигнала анализируют с использованием программного обеспечения используемого прибора для проведения ПЦР в режиме реального времени (Real Time PCR).
9.5 Учет и интерпретация результатов
9.5.1 Полученные в ходе испытания данные (кривые накопления флуоресцентного сигнала) анализируют по нескольким каналам детекции с использованием программного обеспечения прибора.
9.5.2 Результаты интерпретируют на основании наличия (или отсутствия) пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией на графике зависимости интенсивности флуоресценции от количества циклов, что соответствует значению порогового цикла Ct.
9.5.3 Учет результатов испытания следует начинать с результатов амплификации ДНК контрольных образцов в соответствии с таблицами оценки результатов контрольных реакций (таблицы 8 - 11). Для положительного контроля ПЦР в таблицах результатов по каналам FAM/Green и JOE/Yellow должны присутствовать значения порогового цикла Ct соответствующих значений в зависимости от программы амплификации. Для отрицательного контроля экстракции и отрицательного контроля ПЦР значения порогового цикла Ct по всем каналам должны отсутствовать. Отсутствие положительного сигнала в пробе с положительным контролем ПЦР (К+) или превышение граничного значения Ct, указанного в таблице, может свидетельствовать об ошибках, допущенных на этапе постановки ПЦР. В таком случае необходимо провести этап ПЦР повторно.
Таблица 13
Оценка результатов контролей для таблиц 4, 6, 8, 10
Контроли | Контролируемый этап испытаний | Значение Ct по каналу | |
FAM/Green | JOE/Yellow | ||
В- | Экстракция ДНК | Нет значений | Нет значений |
К- | ПЦР | Нет значений | Нет значений |
К+ | ПЦР | <= 31 | <= 31 |
Проба | <= 37 | <= 35 |
В образце обнаружена ДНК сои/кукурузы, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 35 (таблица 13). При получении значения Ct > 35 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим испытанию из-за низкого содержания в нем ДНК кукурузы/сои.
ДНК ГМ линии считают обнаруженной, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 37.
Таблица 14
Оценка результатов контролей для таблиц 5, 7, 9
Контроли | Контролируемый этап испытаний | Значение Ct по каналу | |
FAM/Green | JOE/Yellow | ||
В- | Экстракция ДНК | Нет значений | Нет значений |
К- | ПЦР | Нет значений | Нет значений |
К+ | ПЦР | <= 21 | <= 21 |
Проба | <= 27 | <= 25 |
В образце обнаружена ДНК сои/кукурузы, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 25 (таблица 14). При получении значения Ct > 25 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем ДНК кукурузы/сои.
ДНК ГМ линии обнаружена, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 27.
Таблица 15
Оценка результатов контролей для таблицы 11
Контроли | Контролируемый этап испытаний | Значение Ct по каналу | |
FAM/Green | JOE/Yellow | ||
В- | Экстракция ДНК | Нет значений | Нет значений |
К- | ПЦР | Нет значений | Нет значений |
К+ | ПЦР | <= 35 | <= 35 |
Проба | <= 40 | <= 37 |
В образце обнаружена ДНК кукурузы, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 37 (таблица 15). При получении значения Ct > 37 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем ДНК кукурузы.
ДНК ГМ линии обнаружена, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 40.
Таблица 16
Оценка результатов контролей для таблицы 12
Контроли | Контролируемый этап испытаний | Значение Ct по каналу | |
FAM/Green | JOE/Yellow | ||
B- | Экстракция ДНК | Нет значений | Нет значений |
K- | ПЦР | Нет значений | Нет значений |
K+ | ПЦР | <= 31 | <= 31 |
Проба | <= 37 | <= 37 |
В образце обнаружена ДНК рапса, если для данной пробы в таблице результатов по каналу JOE/Yellow определено значение порогового цикла Ct <= 37 (таблица 16). При получении значения Ct > 37 по каналу JOE/Yellow для анализируемой пробы требуется повторное испытание данной пробы, начиная с первого этапа испытаний (экстракция ДНК). При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем ДНК рапса.
ДНК ГМ линии обнаружена, если для данной пробы в таблице результатов по каналу FAM/Green определено значение порогового цикла Ct <= 37.
9.5.4 Проверка условий достоверности испытаний
9.5.4.1 Отсутствие положительного сигнала в пробе с положительным контролем ПЦР (К+) или превышение граничных значений Ct, указанных в таблицах 13 - 16, может свидетельствовать о неправильно выбранной программе амплификации и о других ошибках, допущенных на этапе постановки ПЦР. В таком случае необходимо провести этап ПЦР повторно.
9.5.4.2 Появление любого значения Ct в таблице результатов для отрицательного контроля экстракции (на любом из каналов) и для отрицательного контроля ПЦР (на любом из каналов) свидетельствует о наличии контаминации реактивов или образцов. В этом случае результаты анализа по всем пробам считаются недействительными. Требуется повторить ПЦР-исследование всех проб, начиная с этапа экстракции ДНК, а также предпринять меры по выявлению и ликвидации источника контаминации.
9.5.4.3 При получении значения Ct в таблице результатов по каналам Yellow и/или Green для анализируемой пробы более указанных пороговых значений Ct требуется повторно провести ПЦР-исследование соответствующего образца, начиная с этапа экстракции ДНК. При повторном получении аналогичного результата образец считают не подлежащим анализу из-за низкого содержания в нем растительной ДНК и/или ДНК ГМ линии.